病理實驗制片過程中,我們經常會遇到含鈣高的組織,因其組織結構質地太硬,組織中存有的鈣鹽會妨礙使用常規方法制作 良好切片,經固定后,必須除去鈣鹽使組織軟化,方能進行常規切片。
骨組織含鈣量最多,所以脫鈣是制作骨組織切片的重要環節,尤其需要進行免疫組化的骨組織。
為了達到骨組織既充分脫鈣,又保護骨組織的抗原不受破壞,需對骨組織固定之后再脫鈣或采用兼有固定與脫鈣的試劑處 理,然后才能常規制片。
一、骨脫鈣方法
常見的脫鈣方法主要有單純酸類脫鈣法、混合酸類脫鈣法以及有機螯合劑法。 單純酸類脫鈣法:
主要有甲酸、硝酸、鹽酸等,硝酸和甲酸應用最多。
①甲酸是一種使用范圍較廣的脫鈣劑,濃度一般10%,脫鈣速度較慢,適合骨髓組織脫鈣,不適合皮質骨的脫鈣。
②硝酸脫鈣液缺點是形成亞硝酸而使溶液呈黃色,產生顏色即迅速影響脫鈣速度,且組織的黃染會妨礙隨后的染色,可在 硝酸內加入0.1%尿素可以防止變黃而使之無色。
③鹽酸脫鈣液易使組織收縮,作用速度較快,用氯化鈉作為溶劑則效果良好。
混合酸類脫鈣法: 兩種酸類脫鈣劑一起使用,或在單純酸內加入另一種脫鈣劑或少量的其它試劑所配制的脫鈣液。 特點是脫鈣完全,快速,防止纖維組織過度膨脹,減少組織破壞對染色結果的影響,通過加入不同的化學成分可以彌補單純 酸類脫鈣劑的不足。
①含甲酸脫鈣液(甲酸-福爾馬林液) 配方:甲酸 5-25ml 福爾馬林 5ml 蒸餾水 加至 100ml 5%的甲酸是良好的一種常規脫鈣劑,速度適當,組織損害小。當甲酸成分增至25%則增快脫鈣速度,加入甲醛可適當保護 組織不受酸損害(注意:增加脫鈣速度只能靠犧牲細胞微細構造來獲得)。根據組織的厚度和鈣化程度,5%甲酸在2至4天 可以完全脫鈣。
②含鹽酸脫鈣液(Von Ebnei氏液)
配方:
濃鹽酸 15ml 氯化鈉 7.5ml 蒸餾水 加至 100ml
③含硝酸脫鈣液
配方
1:福爾馬林 5ml 硝酸(比重1.41) 7.5-15ml
蒸餾水 加至 100ml
此配方中甲醛可以部分抑制硝酸的浸軟作用,同時具有固定作用,硝酸脫鈣迅速,組織不膨脹,掌握好可以直接脫水,不影 響染色。不過最好先洗去硝酸。
配方2:
硝酸(用0.1尿素穩定) 5-10ml 蒸餾水 加至 100ml 此配方用作常規脫鈣劑,作用迅速,對組織不膨脹,對細胞的保存和染色比前者更好,能適用于多種染色技術,但最好每日 早晚更換一次新鮮溶液,一般1-3天完成。
④螯合劑脫鈣
EDTA(乙er胺四乙酸)是用于脫鈣的螯合劑。為有機化合物,有結合某些金屬的能力,能結合鈣鹽,15%的溶液即起脫鈣 作用,組織用此方法脫鈣,對組織破壞性小,即放置數月亦不致引起對組織的破壞,對以后大多數的染色技術皆可得到滿意 結果。
二、骨脫鈣步驟
1.取材:將骨組織固定于10%福爾馬林24小時后再鋸取厚度約0.5厘米骨片。
2.固定:再以10%福爾馬林固定2天。
3.將組織置于脫鈣劑中,每日更換新鮮液、直至組織軟化為止。
4.流水沖洗24小時/2%亞硫酸鈉水溶液中和,至少3小時,水洗至少1小時(除酸)。
5.進行常規脫水,透明,浸蠟,切片。
三、鑒定脫鈣是否徹底
確定脫鈣“終點”有以下三種方法:
1.最常用的是最簡單的方法――針刺,如果很容易被刺透,而且不感到阻力時,說明組織基本上脫鈣完全,否則應繼續脫 鈣。 靠組織的柔軟性測驗脫鈣作用靠不住,而且這種插入一根針以察覺鈣沉淀的方法會造成組織損傷。
2.用X射線檢查:看組織內是否仍有鈣質。
3.用化學實驗檢查: 取5ml脫鈣液用2M的NaOH(氫氧Hua鈉)調整至中性,再加5%草酸鈉或草酸銨1ml,液體混濁表示有鈣質。遲至5分鐘仍 不混濁表示脫鈣液中不含有鈣質。 組織中仍有鈣質時,一定量的鈣離子會溶于脫鈣液中,游離的鈣會干擾脫鈣作用的完成。顯然,應在每次試驗時完全更換, 在試驗中必須經過2-3小時間隔讓鈣溶解。
四、優質脫鈣劑的標準
(a)完全脫鈣;
(b)不損傷組織細胞或纖維;
(c)不妨礙以后的染色技術;
(d)適當的脫鈣速度。
收費標準/服務周期/提供結果:
歡迎咨詢詳談,我們會根據您的方案及需求制定詳細的服務協議。
更多實驗技術服務請瀏覽網站其他內容,或來電咨詢!
做實驗,找碩璽!您的科研生涯,我們一路相伴!
【平臺項目開展范圍】慢病毒,腺病毒,RNAi類,分子生物實驗,病理實驗,免疫學實驗,細胞實驗,動 物實驗,蛋白組學實驗,芯片類實驗,并為廣大客戶朋友們提供課題設計指導、基金申請指導、SCI、核 心期刊等服務。
【碩璽生物】已開展了數千個實驗外包項目。我們專注于醫學課題研究,已從課題申請、方案設計、試劑 采購、模型構造、標本檢測、數據分析、以及對SCI撰寫與發表的支持,各個環節積累了數千個成功案例 經驗,為數千個來自臨床的科研工作者解決了大量的科研問題。更多相關實驗服務信息請咨詢碩璽生物。