實驗技術簡介:
體外神經細胞的培養已成為神經生物學研究中十分有用的技術手段。
神經細胞培養的主要優點:
(1)分散培養的神經細胞在體外生長成熟后,能保持結構和功能上的某些特點, 而且長期培養能形成髓鞘和建立突觸聯系,這就提供了體內生長過程在體外重現的機會。
(2)能在較長時間內直接觀察活細胞的生長、分化、形態和功能變化,便于使用各種不同的技術方法如相差顯微鏡、熒光顯 微鏡、電子顯微鏡、激光共聚焦顯微鏡、同位素標記、原位雜交、免疫組化和電生理等手段進行研究。
(3)易于施行物理(如缺血、缺氧)、化學和生物因子(如 神經營養因子)等實驗條件, 觀察條件變更對神經細胞的直接或間接作用。
(4)便于從細胞和分子水平探討某些神經疾病的發病機制,藥物或各種因素對胚胎或新生動物神經細胞在生長、發育和分化等各方面的影響。
一、液體配制:
硼酸硼砂緩沖液:0.05M四硼化鈉45ml,0.2M硼酸55ml,pH8.4;
胰酶-EDTA消化液: 胰酶-0.125g;EDTA-0.2g;D-Hanks平衡鹽液定容至100ml。
所用的培養板、培養瓶或玻片預先經 100μg/L多聚賴氨酸硼酸鹽緩沖液于37℃包被4h,三蒸水洗三遍晾干備用。
二、操作步驟如下:
1、出生2 d SD大鼠麻醉后,碘酒、75%乙醇消毒腹部皮膚,依次剪開皮膚、肌肉、皮下筋膜,無菌操作下取出胚胎放入預冷的D-Hanks平衡鹽液中。
2、在解剖顯微鏡下分離并取出胚胎大腦皮層,除去腦膜,剪碎組織成約1mm3大小,加入胰酶-EDTA消化液并放入37℃孵箱內消化20min,中間搖晃一次。
3、隨后用滴管吸出組織轉移到裝有預冷的培養液(DMEM+10%FBS)的離心管內終止消化液作用 5min。
4、用滴管吸出組織轉移到裝有預冷的DMEM+10%FBS的離心管內,用火焰拋光的巴斯德滴管吹打數次,靜置后取上清吸到另一支離心管內。重復上述步驟2~3次。
5、將所收集的上清經200目篩網過濾。
6、過濾后的細胞懸液于800r/min離心5min,棄上清,管內加入新鮮培養液(DMEM+20%FBS)并吹打成單細胞懸液。
7、細胞計數,調整細胞密度按1.5×105/cm2種入6孔板內,放入CO2孵箱中培養。培養48h后換液并加入 Ara-C使其終濃度為1×10-5mM/L。Ara-C作用24h后全量換液。以后每隔3天半量換液一次。
三、無菌操作的注意事項:
細胞原代培養一定要保持工作區的無菌清潔,先用紫外燈殺菌1h,操作前用75%乙醇消毒,穿上實驗服,戴上口罩和帽子,操作時不能大聲說話,雙手戴上一次性橡膠手套,整個無菌操作都應該在酒精燈的周圍進行。
四、服務流程:
1、 討論分析實驗方案
2、 確定服務內容
3、 簽訂服務合同
4、 進行實驗,定期向客戶反饋
5、 整理實驗報告
6、 完成合同內容
7、 后續實驗服務,進一步合作
五、細胞服務項目:
收費標準/服務周期/提供結果:
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